Document 1 — Le protocole. On écrase trois fraises dans un sac de congélation fermé. On ajoute 10 mL d’un mélange d’eau, de sel et de liquide vaisselle, puis on malaxe doucement deux minutes. On filtre le mélange dans un tube. On verse ensuite lentement, le long de la paroi du tube, un volume égal d’alcool sortant du congélateur. Après quelques minutes, une pelote blanche filamenteuse apparaît à la limite entre le filtrat et l’alcool, puis monte dans l’alcool.
Document 2 — Deux tubes témoins. Tube A : même protocole, mais sans liquide vaisselle ; on n’obtient presque pas de pelote. Tube B : même protocole, mais sans fraises (seulement l’eau, le sel, le liquide vaisselle et l’alcool) ; aucune pelote n’apparaît.
Document 3 — Une coloration. Le vert de méthyle acétique colore en vert le noyau des cellules sur une préparation microscopique. Déposé sur un fragment de la pelote, il le colore aussi en vert.
- 1. En écrasant les fraises, on sépare les unes des autres les du fruit.Le broyage sépare les cellules et met leur contenu au contact du mélange.
- 2. Le tube A montre que, sans détergent, l’ADN reste enfermé derrière les des cellules et des noyaux.Le liquide vaisselle détruit les membranes ; sans lui, l’ADN n’est presque pas libéré.
- 3. Le tube B montre que la pelote ne vient pas des produits ajoutés, mais des .Sans fraises, pas de pelote : elle provient des cellules du fruit.
- 4. La pelote se forme dans l’alcool parce que l’ADN n’y est pas .L’ADN n’est pas soluble dans l’alcool : ses molécules s’y rassemblent et deviennent visibles.
- 5. Le colorant du document 3 se fixe sur la molécule contenue dans le noyau ; la pelote est donc faite d’.Le vert de méthyle acétique se fixe sur l’ADN : la pelote est bien de l’ADN, qui vient des noyaux des cellules de fraise.